在脲酶測定實驗中，配制27%氫氧化鈉（NaOH）溶液是常見的步驟，但許多實驗人員反映在配制過程中會出現白色沉淀問題，這通常與化工產品的純度和配制方法有關。以下將詳細分析問題原因并提供解決方案。

一、問題原因分析

1. 氫氧化鈉純度不足：工業級或低純度NaOH可能含有碳酸鈉（Na?CO?）等雜質，這些雜質在濃堿溶液中易形成白色沉淀。脲酶測定對試劑純度要求較高，雜質可能干擾實驗結果。
2. 二氧化碳吸收：NaOH易吸收空氣中的CO?，生成Na?CO?，反應式為：2NaOH + CO? → Na?CO? + H?O。Na?CO?在濃NaOH溶液中溶解度較低，從而析出白色沉淀。
3. 配制用水問題：若使用硬水或含有鈣、鎂離子的水，會與OH?反應生成不溶性氫氧化物沉淀。
4. 溶解操作不當：快速加入NaOH或攪拌不充分可能導致局部過飽和，促使沉淀形成。

二、解決方案

1. 選用高純度試劑：優先使用分析純或更高純度的NaOH，減少雜質引入。購買時檢查產品說明，確保無碳酸鹽標注。
2. 使用無二氧化碳水：配制時使用蒸餾水或去離子水，并煮沸冷卻以去除溶解的CO?。儲存溶液時密封容器，避免與空氣長時間接觸。
3. 優化配制方法：緩慢將NaOH加入水中，同時持續攪拌（使用磁力攪拌器更佳），避免局部濃度過高。配制27%溶液時，可先計算所需質量（例如，27g NaOH加73g水），控制溫度在室溫，防止過熱加速CO?吸收。
4. 過濾處理：若已有沉淀，可用微孔濾膜（如0.45μm）過濾溶液，但注意過濾可能損失部分NaOH，建議重新配制。
5. 驗證溶液質量：配制后測試pH值（27% NaOH溶液pH應接近14），或進行空白實驗，確保無沉淀影響脲酶活性測定。

三、預防與注意事項

• 儲存NaOH于干燥密閉容器中，避免受潮和接觸空氣。
• 定期檢查試劑，過期或結塊的NaOH應丟棄。
• 在脲酶測定中，若沉淀問題持續，考慮改用標準緩沖液或咨詢供應商。

白色沉淀問題多源于雜質和操作不當，通過提高試劑純度、優化配制流程和嚴格儲存條件，可有效避免此問題，確保實驗準確性。